ابزاری برای ویرایش ژنوم خاص بافت در گیاهان
ترجمه نشده

ابزاری برای ویرایش ژنوم خاص بافت در گیاهان

عنوان فارسی مقاله: CRISPR-TSKO: ابزاری برای ویرایش ژنوم خاص بافت در گیاهان
عنوان انگلیسی مقاله: CRISPR-TSKO: A Tool for Tissue-Specific Genome Editing in Plants
مجله/کنفرانس: روندها در علوم گیاهی - Trends In Plant Science
رشته های تحصیلی مرتبط: زیست شناسی
گرایش های تحصیلی مرتبط: علوم سلولی و مولکولی، ژنتیک، علوم گیاهی
کلمات کلیدی فارسی: ژنوم شناسی کارکردی، ویرایش ژنوم، CRISPR-Cas9 ،CRISPR-TSKO
کلمات کلیدی انگلیسی: functional genomics، genome editing، CRISPR-TSKO، CRISPR-Cas9
نوع نگارش مقاله: بررسی کوتاه (Mini Review)
شناسه دیجیتال (DOI): https://doi.org/10.1016/j.tplants.2019.12.002
دانشگاه: Laboratory for Genome Engineering and Synthetic Biology, Division of Biological Sciences, 4700 King Abdullah University of Science and Technology, Thuwal 23955-6900, Saudi Arabia
صفحات مقاله انگلیسی: 3
ناشر: الزویر - Elsevier
نوع ارائه مقاله: ژورنال
نوع مقاله: ISI
سال انتشار مقاله: 2020
ایمپکت فاکتور: 9/941 در سال 2019
شاخص H_index: 233 در سال 2020
شاخص SJR: 4/650 در سال 2019
شناسه ISSN: 1360-1385
شاخص Quartile (چارک): Q1 در سال 2019
فرمت مقاله انگلیسی: PDF
وضعیت ترجمه: ترجمه نشده است
قیمت مقاله انگلیسی: رایگان
آیا این مقاله بیس است: خیر
آیا این مقاله مدل مفهومی دارد: ندارد
آیا این مقاله پرسشنامه دارد: ندارد
آیا این مقاله متغیر دارد: ندارد
کد محصول: E14740
رفرنس: دارای رفرنس در داخل متن و انتهای مقاله
فهرست مطالب (انگلیسی)

Heritable Genome Editing in Plants

Tissue-Specific Gene Knockdown

Advantages and Applications of Tissue-Specific Gene Knockdown

Limitations of Tissue-Specific Gene Knockdown

References

بخشی از مقاله (انگلیسی)

Heritable Genome Editing in Plants The adaptive immune system of prokaryotes, [clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) and CRISPR-associated proteins (CRISPR/Cas system)] CRISPRCas9 system, has been domesticated as a powerful genome-editing tool that has revolutionized the functional genomics of eukaryotes [1]. In the Streptococcus pyogenes CRISPR/Cas9 system, Cas9 endonuclease is directed by a single guide RNA to a complementary 20-nucleotide target DNA sequence where, upon the recognition of the protospacer-associated motif (NGG), the active Cas9 make DNA double-stranded breaks (DSBs) [2] and the following imprecise repair of DSBs leads to targeted mutations in DNA. The CRISPR-Cas9 system has been established successfully in the majority of model and crop species for functional knockouts and trait improvements [3,4]. Similarly, coupling of the CRISPR-Cas9 system with a homologydirected repair system paved the way for precise genome engineering in plants [5]. Moreover, CRISPR-Cas9 was applied to produce foreign DNA-free, non-genetically modified organism (GMO)-improved crops [6]. However, all of these genome-editing approaches have two main objectives, that is, to improve the rate of targeted mutagenesis and to recover mutant progenies [1]. For that, various methodologies like use of regulatory elements (enhancers, promoters, and terminators), specific cell-cycle/phases, viral replicons, and physical and chemical conditions were applied to enhance expression of CRISPR-Cas9 machinery and hence the recovery of edited plants [3,4,7]. Despite their success, it remains that more than 10% of Arabidopsis (Arabidopsis thaliana) genes, cannot be characterized with these methods. These genes are essential or have pleiotropic effects and their complete removal interferes with the cellular machinery, reproduction, or development [1]. In the absence of heritable homozygous knockouts for these essential and pleiotropic genes, their functions are assumed and their real roles remain unknown.